产品信息
产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格（元） | 促销价（元） |
Hieff UNICON? Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix | 11184ES03 | 1 mL | 383.00 | 223.00 |
Hieff UNICON? Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix | 11184ES08 | 5×1 mL | 1653.00 | 663.00 |
Hieff UNICON? Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix | 11184ES50 | 10×5 mL | 12533.00 | 6613.00 |
Hieff UNICON? Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix | 11184ES60 | 20×5 mL | 19833.00 | 12563.00 |
产品描述
Hieff UNICON? Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix是2×实时定量PCR扩增的预溶液，具有高灵敏度和高特异性的特点，颜色为蓝色，具有加样示踪的作用。核心组分Hieff UNICON? Taq DNA聚合酶采用抗体法热启动，可以有效抑制样品准备过程中引物退火导致的非特异性扩增。同时配方添加了提升PCR反应扩增效率因子和均衡不同GC含量（30~70%）基因扩增的促进因子，使定量PCR可以在宽广的定量区域内获得良好的线性关系。
本产品中含有特殊的ROX Passive Reference Dye，适用于所有qPCR仪器，无需在不同的仪器上调整ROX的浓度，只需在配制反应体χ时加入引物和模板即可进行扩增。
运输和保存方式
冰袋运输。-20℃避光储存，有效期18个月。
本品避免反复冻融。产品中含有荧光染料SYBR Green I，保存或配制反应体χ时需避免强光照射。
注意事项
1. 推荐使用本公司cDNA合成试剂盒（货号：11141ES），以有效去除RNA样品中残留的基因组。
2. 解冻后Master Mix可能出现絮状或白色沉淀，手握缓慢溶解并上下轻柔颠倒混匀至溶液澄清，不影响试剂性能。
3. 为了您的安全和健康，请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
4. 本产品仅作科研用途!
反应体χ
组分 | 体积（μL） | 体积（μL） | 终浓度 |
Hieff UNICON? Universal Blue qPCR SYBR Green Master Mix | 25 | 10 | 1× |
Forward Primer (10 μM) | 1 | 0.4 | 0.2 μM |
Reverse Primer (10 μM) | 1 | 0.4 | 0.2 μM |
模板DNA | X | X | - |
无菌超纯水 | to 50 | to 20 | - |
【注】：使用前务必充分混匀，避免剧烈震荡产生过多气泡。
a) 引物浓度：通常引物终浓度为0.2 μM，也可以根据情况在0.1-1.0 μM之间进行调整。
b) 模板浓度：如模板为未稀释cDNA原液，使用体积不应超过qPCR反应总体积的1/10。
c) 模板稀释：cDNA原液建议5-10倍稀释，最模板加入量以扩增得到的Ct值在20-30个循环为好。
d) 反应体χ：推荐使用20 μL或50 μL，以保证目的基因扩增的有效性和重复性。
e) 体χ配制：请于超净工作台内配制，并使用无核酸酶残留的枪头、反应管；推荐使用带滤芯的枪头。避免交叉污染和气溶胶污染。
标准程序
循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 95℃ | 2 min | 1 |
变性 | 95℃ | 10 sec | 40 |
退火/延伸 | 60℃ | 30 sec★ |
熔解曲线阶段 | 仪器默认设置 | 1 |
快速程序
循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 95℃ | 30 sec | 1 |
变性 | 95℃ | 3 sec | 40 |
退火/延伸 | 60℃ | 20 sec★ |
熔解曲线阶段 | 仪器默认设置 | 1 |
【注】 快速程序适用于绝大多数基因，个别复杂二级结构基因可尝试标准程序。
a) 退火温度和时间：请根据引物和目的基因的长度进行调整。
b) 荧光信号采集（★）：请按照仪器使用说明书要求进行实验程序设置，几种常见仪器的时间设定如下：
20 sec：Applied Biosystems 7700, 7900HT, 7500 Fast
31 sec：Applied Biosystems 7300
32 sec：Applied Biosystems 7500
c) 熔解曲线：通常情况下可以使用仪器默认程序。
结果分析
定量实验至少需要三个生物学重复。反应结束后需要确认扩增曲线及熔解曲线。
1) 扩增曲线：标准扩增曲线为S型。
Ct值落在20-30之间时，定量分析最准确；
Ct值小于10，需要将稀释模板后，重新进行实验；
Ct值介于30-35之间时，需要提高模板浓度，或者增大反应体χ的体积，以提高扩增效率，保证结果分析的准确性；
Ct值大于35时，检测结果无法定量分析基因的表达量，但可用于定性分析。
2) 熔解曲线：
熔解曲线单峰，表明反应特异性好可以进行定量结果分析；若熔解曲线出现双峰或者多峰，则不能进行定量分析。
熔解曲线出现双峰，需要通过DNA琼脂糖凝胶电泳判断非目标峰是引物二聚体还是非特异性扩增。
如果是引物二聚体，建议降低引物浓度，或者重新设计扩增效率高的引物。
如果是非特异性扩增，请提高退火温度，或者重新设计更高特异性的引物。
引物设计指南
1. 推荐引物长度25 bp左右。扩增产物长度150 bp为佳，可以在100 bp-300 bp内选择。
2. 正向引物和反向引物的Tm值相差不宜超过2℃。引物Tm值60℃-65℃为佳。
3. 引物碱基分布要均匀，避免出现连续的4个相同碱基，GC含量控制在50%左右。3’端最hou一个碱基最hao为G或C。
4. 引物内部或者正反两条引物间最hao避免出现有3个碱基以上的互补序列。
5. 引物特异性需要用NCBI BLAST程序进行核对。避免引物3’端有2个碱基以上的非特异性互补。
6. 设计完成的引物需要进行扩增效率的检测，只有具备相同扩增效率的引物才可用于定量比较分析。
适用机型
ABI: 5700, 7000, 7300, 7700, 7900HT Fast, StepOne, StepOne Plus; 7500, 7500 Fast, ViiA7, QuantStudio 3 and 5, QuantStudio 6,7,12k Flex;
Stratagene: MX3000P, MX3005P, MX4000P;
Bio-Rad: CFX96, CFX384, iCycler iQ, iQ5, MyiQ, MiniOpticon, Opticon, Opticon 2, Chromo4;
Eppendorf: Mastercycler ep realplex, realplex 2 s;
Qiagen: Corbett Rotor-Gene Q, Rotor-Gene 3000, Rotor-Gene 6000;
Roche Applied Science: LightCycler 480, LightCycler 2.0; Lightcycler 96;
Thermo Scientific: PikoReal Cycler;
Cepheid: SmartCycler; Illumina: Eco qPCR.
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