康宁12孔细胞培养小室

应用指南：

1、混合培养 0.4、3.0μm

细胞/细胞、细胞/物质相互作用、基质与上皮、细胞/基质的相互作用、肿瘤多相性。

2、趋化性 3.0、5.0、8.0、12.0μm

血液有形成分的趋化性、噬细胞、巨噬细胞的迁移。

3、药物的转移 0.4、3.0μm

受体定位、药物反应极性、药物作用于血管渗透性、药物通过上皮、内皮细胞、脑血管上皮细胞。

4、Endocytosis 0.4、3.0μm

膜同期、细胞因子、激素、抗体、毒素的受体－配体反应、蛋白质更新。

5、体外受精 0.4、0.3μm

卵泡粒膜细胞培养、内分泌和旁分泌对卵泡粒膜的影响。

6、转移与入侵 0.4、8.0、12.0μm

7、微生物发病 0.4、3.0μm

病毒细菌、寄生虫、吸附宿主血细胞、入侵穿透上皮屏障、微生物受体及其药物作用。

8、极性 0.4、3.0μm

离子通道、蛋白、酶、酯类、受体的极性、极性发生与维持、紧密连接的合成与集合。

9、组织模型重建 0.4、3.0μm

伤口愈合、血管发生、上皮再生、感染。

10转移/渗透性研究 0.4、3.0μm

大分子、离子、水、小分子、如：激素、生长因子。

Netwell

1、免疫细胞染色。

2、3-D组织培养。

3、74、200、800μm孔径多种选择。

4、详细资料请查询。

Costar Transwell 聚碳酯膜(表面组织培养处理,并与大多数有机固定剂、染色剂相容)

Transwell-Clear(聚乙烯膜，易于在相差显微镜下观察细胞迁移和单层细胞形成)

Transwell-COL(胶原包被膜I型、III型胶原混合物包被、帮助细胞吸附、生长

（1）.共培养体系：

小于3.0um孔径条件下，细胞不会迁徙通过，因此，若研究不涉及细胞运动能力，不需要细胞穿过聚碳酸酯膜，则应选择3.0μm以下孔径。常用0.4、3.0μm。将细胞A种于上室，细胞B种于下室，可以研究细胞B分泌或代谢产生的物质对细胞A的影响。

（2）.趋化性实验

可用5.0、8.0、12.0μm膜，上室细胞可穿过聚碳酸酯膜进入下室，计数进入下室的细胞量可反映下室成分对上室细胞的趋化能力。

①细胞B对细胞A的趋化作用：将细胞A种于上室，细胞B种于下室，可以研究细胞B分泌或代谢产生的物质对细胞A的趋化作用。

②趋化因子对细胞的趋化作用：将细胞种于上室，下室加入某种趋化因子，可研究该趋化因子对细胞的趋化作用。

（3）.肿瘤细胞迁移实验

常用8.0、12.0μm膜，上室种肿瘤细胞，下室加入FBS或某些特定的趋化因子，肿瘤细胞会向营养成分高的下室跑，计数进入下室的细胞量可反映肿瘤细胞的迁移能力。

（4）.肿瘤细胞侵袭实验

常用8.0、12.0μm膜，原理与肿瘤细胞迁移实验类似。上室种肿瘤细胞，下室加入FBS或某些特定的趋化因子，肿瘤细胞会向营养成分高的下室跑，但与肿瘤细胞迁移实验不同的是，聚碳酸酯膜上室侧铺上一层基质胶，用以模仿体内细胞外基质，细胞欲进入下室，先要分泌基质金属蛋白酶（MMPs）将基质胶降解，方可通过聚碳酸酯膜。计数进入下室的细胞量可反映肿瘤细胞的侵袭能力。