本研究聚焦瘢痕疙瘩成纤维细胞电穿孔转染条件优化。通过系统调控电场强度、脉冲时长及转染试剂用量等参数，经多批次实验与细胞活力、转染效率检测，确定了最佳转染组合。成果提升转染效率至 [X]%，为瘢痕疙瘩基因治疗及相关机制研究奠定精准技术基础，具临床与科研双价值。
瘢痕疙瘩作为皮肤创伤愈合异常所致纤维增生性疾病，其成纤维细胞异常活跃，胶原过度沉积，严重影响外观与功能。基因治疗策略兴起为其干预带来曙光，而电穿孔法因适用性广、可导入大片段 DNA 等优势备受关注。然当前转染效率不稳定、细胞损伤大等问题制约其应用，故深入优化转染条件迫在眉睫，以期为瘢痕疙瘩病理阐释与治疗开辟通路。
瘢痕疙瘩组织取自临床手术切除标本，患者知情同意且经伦理审批。组织经酶消化法获取原代成纤维细胞，置于含 10% 胎牛血清、1% 双抗的 DMEM 高糖培养基，37°C、5% CO₂饱和湿度孵箱培养，传代至 3 - 5 代用于实验，确保细胞活性与稳定性。
选用商品化转染质粒（携带荧光报告基因，便于效率监测），电穿孔缓冲液优化离子成分以适配细胞渗透压；电穿孔仪（具备精确脉冲调控功能，可设多参数模式）、荧光显微镜（高分辨率成像，定量分析荧光强度）、流式细胞仪（精准分选、统计转染细胞比例）等确保实验数据精准获取。
采用多因素实验方案。电场强度设梯度：[X₁] - [Xₙ] V/cm，依前期预实验范围微调；脉冲时长从 [Y₁] - [Yₘ] ms 以等差递增；转染试剂与质粒比例依质量比设 [Z₁] - [Zₒ] 组。每组实验至少重复 3 次，每次含平行样本，涵盖不同参数组合全面筛选最优条件。
细胞消化成单细胞悬液，计数后按分组调整密度至 [具体数值] 个 /mL。与适量转染试剂 - 质粒复合物轻柔混匀，冰浴 [时长] 以稳定复合物。移至预冷电穿孔 cuvette，依设定参数电击，速转至预热新鲜培养基孵育，特定时间点（6 h、24 h、48 h 等）采样检测。
采用 MTT 法，各样本孵育 MTT 溶液 [时长]，生成甲臜晶体以 DMSO 溶解，酶标仪测 490 nm 吸光度，依公式算细胞活力（实验组 / 对照组 ×100%），监控电穿孔损伤程度。
荧光显微镜下随机视野计数荧光细胞占总细胞比例，直观初判；再以流式细胞仪精准分选、统计荧光阳性细胞，给出精确转染效率数值，绘制不同参数下效率曲线。
随电场强度、脉冲时长过度增加，细胞活力显著下降（如强度超 [阈值 X] V/cm 或时长超 [阈值 Y] ms 时，活力降至 60% 以下），呈剂量依赖负相关，揭示高参数引发细胞膜不可逆损伤、代谢紊乱；合理参数区间内（如强度 [X₂ - X₃] V/cm、时长 [Y₂ - Y₃] ms），细胞活力维持 80% - 90%，为后续转染平衡提供基础。
低电场强度或短脉冲时长下，转染效率欠佳（不足 20%），因不足以形成足够膜孔促进质粒入胞；适度提升参数，效率显著上扬，在电场强度 [X₄] V/cm、脉冲时长 [Y₄] ms 及转染试剂 - 质粒比 [Z₃] 时达峰值 [X]%，后随参数极端化因细胞损伤加剧而效率回落，明确了关键参数 “甜蜜点”。
本研究创新点在于多维度精细拆解电穿孔条件，突破以往粗放设置局限。从细胞微观生理响应看，适宜参数确保膜孔形成与修复动态平衡，既利质粒摄取又防过度损伤。对比传统化学转染，电穿孔优化后效率提升 [X - Xₒ]%，且适用于瘢痕疙瘩成纤维细胞这类难转染细胞，拓展基因操作边界。后续研究可基于此探索特定基因导入后对瘢痕疙瘩细胞增殖、胶原合成通路的精准调控，向临床治疗靶点迈进。
综合考量，电场强度 [X₄] V/cm、脉冲时长 [Y₄] ms 及转染试剂 - 质粒比 [Z₃] 构成瘢痕疙瘩成纤维细胞电穿孔最优转染条件，兼顾高转染效率与细胞活力保障。此成果为瘢痕疙瘩基因工程研究供给核心技术参照，助力科研深度挖掘疾病机制、临床转化靶向基因疗法，革新瘢痕疙瘩诊疗范式。