1) Bradford法对于去污剂敏感，受高浓度去垢剂的影响。需确保SDS低于0.1%，Triton X-100低于0.1%，Tween-20,60,80低于0.06%。含去垢剂的样品推荐使用Novoprotein生产的BCA蛋白浓度测定试剂盒。Bradford蛋白浓度测定试剂盒对样品中各种物质详细的兼容性表，参见Bradford蛋白浓度测定兼容性表。
2) Bradford染色液中考马斯亮蓝易聚集成团，每次使用前请颠倒6～8次并且竖直抓住瓶口做水平圈动作，旋转瓶中液体，帮助充分混匀，但不可以上下振荡混匀。
3) 低温会降低Bradford染色液的敏感度，因此每次使用前应该使Bradford染色液回复到室温，可以倒出每次需要的Bradford染色液，将原瓶放回冰箱，仅仅将需要的Bradford染色液复温，可以减少复温时间。
4) 蛋白标准请在全部溶解后先混匀，再稀释成一系列不同浓度的蛋白标准。标准品曲线配制时，如果吸量不准确或者加样枪不精确会造成标准曲线相关系数减小，可根据需要使用倍比梯度稀释的方法来配制，或者使用精确度高的加样枪。
5) 由于Bradford 法在蛋白浓度增高到一定时候，颜色反应并不成比例增加，因此得到的标准曲线只是在一定范围内可以近似看成直线，每次应按照实际测得的标准曲线计算出相对精确的蛋白浓度。所测蛋白质浓度应确保处于标准曲线线性范围内，否则未知蛋白浓度将出现较大误差。
6) 每次测定蛋白样品时，同时应做新的标准曲线。
7) 反应在5分钟后显色充分，但在10分钟后开始出现沉淀，故建议在加入染色液后5-10分钟内完成检测，误差较小。
8) 如果用玻璃比色杯，可先用甲醇冲洗，然后用洗涤剂清洗，最后用水和丙酮冲洗，或用浓盐酸浸泡过夜，再用水洗净。
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