产品介绍
产品信息
产品名称 | 产品编号 | 规格 | 价格(元) |
Mouse Tissue Direct PCR Kit (With Dye) | 10185ES50 | 50 T | 323.00 |
Mouse Tissue Direct PCR Kit (With Dye) | 10185ES70 | 200 T | 983.00 |
产品描述
本试剂盒可直接快速地对小鼠组织(如鼠尾、鼠耳、鼠趾、肌肉等)样本进行PCR扩增,具有极强的样本兼容性。本试剂盒配备了强力的裂解缓冲液,可以快速裂解样品,释放基因组DNA。裂解液可以直接加入到PCR反应tixi中,无需精提纯化,操作方便。此外,本试剂盒对样品投入量要求低,5 mg小鼠组织或1-5 mm鼠尾即可进行实验。
本试剂盒提供的2× Mouse Direct PCR Mix为2倍浓度的热启动PCR反应液,包含了用于PCR扩增除模板和引物外的所有组分,大大简化操作过程,降低污染几率。
该试剂盒可用于转基因鉴定、小鼠基因分型等。
产品组分
编号 | 组分 | 产品编号/规格 |
10185ES50(50 T) | 10185ES70(200 T) |
10185-A | Buffer ML | 1 mL×5 | 20 mL×1 |
10185-B | Buffer MT | 0.6 mL | 1.25 mL×2 |
10185-C | 2× Mouse Direct PCR Mix | 500 μL | 1 mL×2 |
a)Buffer ML 为裂解缓冲液,包含了强力蛋白变性剂,请戴手套操作。
b)Buffer MT 为终止缓冲液,用以终止Buffer ML的裂解功能。
c)2× Mouse Direct PCR Mix:包含热启动Taq DNA聚合酶、dNTP混合物、MgCl2、反应缓冲液、PCR反应增强剂、优化剂、稳定剂和电泳指示染料等。
运输方法
冰袋运输。
保存方法
1. 组分A:2-8℃保存,有效期1年。使长时间多次使用,请分装冻存,避免交叉污染。
2. 组分B/C:-20℃保存,避免反复冻融。有效期1年。
操作方法
样品基因组DNA释放
1. 剪取5-10 mg动物组织或1-5 mm鼠尾,置于1.5 mL离心管中;
2. 在上述离心管中加入90 μL Buffer ML,轻轻涡旋使得样品完全被裂解液浸润,短暂离心;
3. 在恒温孵育仪中设置95℃孵育15 min;
4. 加入10 μL Buffer MT,轻弹混匀,终止裂解;
5. 选做步骤:12000 rpm离心2 min;
6. 将上清转移至新的离心管,4℃或-20℃保存或直接取上清用于后续PCR扩增。
【注】:组织应尽量剪碎,以便裂解反应更顺利进行。
【注】:95℃孵育,一般15 min即可满足多数PCR需求。若需要的DNA量较大或样品较难裂解,可将时间延长至30 min。组织块不需完全裂解,残余的部分在后续离心步骤中可被除去。
PCR反应鉴定——PCR反应Tx
组分 | 体积(μL) | 终浓度 |
2× Mouse Direct PCR Mix | 10 | 1× |
Forward Primer (10 μM) | 0.5 | 0.2-0.4 μM |
Reverse Primer (10 μM) | 0.5 | 0.2-0.4 μM |
裂解产物(DNA模板) | 1 | - |
ddH2O | 补足至 20 μL | - |
【注】:各组分使用前应充分混匀。
a)模板使用量:建议按1-10%总Tx量取用模板,20 μLTx建议采用1 μL上清液作为模板;
b)引物终浓度:0.2-0.4 μM可以得到较好结果。反应性能较差时,可在0.1-0.5 μM范围内调整引物浓度;
c)反应Tx:推荐使用20 μL,也可根据使用习惯调整Tx体积大小;
d)Tx配制:配制好PCR反应Tx,置于涡旋仪上涡旋混匀,瞬时离心将反应液集于管底。
PCR反应鉴定—PCR反应条件
循环步骤 | 温度 | 时间 | 循环数 |
预变性 | 94℃ | 5 min | 1 |
变性 | 94℃ | 10 sec | 35 |
退火 | 60℃ | 20 sec |
延伸 | 72℃ | 30 sec/kb |
终延伸 | 72℃ | 5 min | 1 |
【注】:a)退火温度:请参考引物的理论Tm值,退火温度可设置低于引物理论值 2-5℃。
b)延伸时间:请按30 sec/kb设定。
c)扩增循环数:35个循环已可以扩增足量产物。
d)电泳上样:取3-5 μL扩增产物上样即可。
对照反应
在PCR结果分析时,不管是阳性结果或阴性结果,如果没有对照反应,都不能确定结果是否可靠。为了便于后续实验结果的分析,建议在进行PCR时,设置阳性和阴性PCR对照反应以便于排除假阳性或假阴性的干扰。
注意事项
1.为了避免样本间交叉污染,每次取样后都需要将取样器材的刃口或与样本直接接触的部位浸入2%次氯酸钠溶液中,反复洗刷数次,然后用干净的纸巾擦干残余液体后再进行使用。为了试验方便,也可准备多个取样器材,在使用完后进行统一清洗,确保每一单独样本均使用的是无污染的取样器材。
2. 建议使用新鲜的动物组织,若为长期冷冻组织,应尽量避免反复冻融,否则会导致模板的降解,影响PCR效率。
3. 建议扩增片段长度1 kb以内,以便扩增效率最?。
4. 为了您的安全和健康,请穿实验服并佩戴一次性手套操作。
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常见问题与解决方法
常见问题 | 可能原因 | 解决方法 |
阳性对照、待测样本均无条带。 | PCR反应Tx或反应条件不合适。 | 使用梯度PCR摸索PCR最?反应条件。 |
PCR试剂保存不当失去活性。 | 2× Mouse Direct PCR Mix应保存于-20℃,使用时避免反复冻融。若使用频繁,可在4℃短时间存放。 |
引物设计问题。 | 尝试重新设计引物进行检查。 |
阳性对照有目的条带,待测样本无条带或条带弱。 | 不当储存或长期储存引起试剂活性丧失。 | 使用新鲜的试剂。 |
加入组织裂解液过量。 | 增大反应Tx,或减少裂解液的用量。 |
样本裂解混合液保存不当或保存时间过久,DNA基因组已经降解。 | 裂解混合液液可在4℃保存2-3天,尽量使用新制备的裂解液混合液进行PCR。 |
模板加入量不适合。 | 在反应Tx1-10%范围内优化模板加入量。 |
PCR循环数不足。 | 增加PCR的循环数,推荐在35-40循环为佳。因为模板复杂,PCR反应要比用纯化的DNA模板多5-10个循环为佳。 |
非特异性扩增 | PCR退火温度太低,循环数、引物浓度或模板浓度太高。 | 增加PCR退火温度,降低PCR循环数、引物浓度或模板浓度。 |
PCR引物错配。 | 重新设计PCR引物。 |
配制PCR反应Tx时温度太高或配制完成后放置时间太久。 | PCR反应TX的配制在低温下进行,配制完成后尽快进行PCR扩增反应。 |
阴性对照出现目的条带 | 操作工具或试剂污染。 | 实验所有试剂或器材均应高压灭菌。操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外。 |
样本间交叉污染。 | 每个取样器只对一个样本使用;或取完一个样本后,将取样器刃口浸入2%的次氯酸钠溶液中,反复涮洗,然后用干净的纸巾擦干残液。 |
HB210806