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(中英文)兔子碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)ELISA Kit操作使用说明书

来宝网 2013/5/15点击1036次

 
rabbit basic fibroblast growth
factor,bFGF ELISA Kit
 
 
Catalog No. CSB-E06938Rb
(96 T) 
 
 

 
  This  immunoassay kit allows  for  the  in vitro quantitative determination of  rabbit
bFGF concentrations in serum, plasma and other biological fluids.
  Expiration date      six months from the date of manufacture
  FOR RESEARCH USE ONLY. NOT FOR USE IN DIAGNOSTIC PROCEDURES.
 
 
 
PRINCIPLE OF THE ASSAY
The microtiter plate provided in this kit has been pre-coated with
an  antibody  specific  to  bFGF.  Standards  or  samples  are  then
added  to  the  appropriate  microtiter  plate  wells  with  a
biotin-conjugated  antibody  preparation  specific  for  bFGF  and
Avidin conjugated to Horseradish Peroxidase (HRP) is added to
each  microplate  well  and  incubated.  Then  a  TMB  (3,3’,5,5’
tetramethyl-benzidine) substrate solution  is added  to each well.
Only  those wells  that contain bFGF, biotin-conjugated antibody
and enzyme-conjugated Avidin will exhibit a change in color. The
enzyme-substrate  reaction  is  terminated  by  the  addition  of  a
sulphuric  acid  solution  and  the  color  change  is  measured
spectrophotometrically at a wavelength of 450 nm ± 2 nm. The
concentration  of  bFGF  in  the  samples  is  then  determined  by
comparing the O.D. of the samples to the standard curve.
DETECTION RANGE
1.56 pg/ml-100 pg/ml. The standard curve concentrations used
for the ELISA’s were 100 pg/ml, 50 pg/ml, 25 pg/ml, 12.5 pg/ml,
6.25 pg/ml, 3.12 pg/ml, 1.56 pg/ml. 
SPECIFICITY
This assay recognizes recombinant and natural rabbit bFGF. No
significant cross-reactivity or interference was observed.
SENSITIVITY
The minimum  detectable  dose  of  rabbit  bFGF  is  typically  less
than 0.39 pg/ml.
The sensitivity of  this assay, or Lower Limit of Detection  (LLD)
was  defined  as  the  lowest  protein  concentration  that  could  be
differentiated from zero.
MATERIALS PROVIDED
Reagent      Quantity
Assay plate  1
Standard  2
Sample Diluent      1 x 20 ml
Biotin-antibody Diluent      1 x 10 ml
HRP-avidin Diluent        1 x 10 ml
Biotin-antibody      1 x 120µl
HRP-avidin  1 x 120µl
Wash Buffer      
1 x 20 ml
  (25×concentrate)
TMB Substrate      1 x 10 ml
Stop Solution      1 x 10 ml 
STORAGE
1. Unopened  test  kits  should  be  stored  at  2-8°C  upon  receipt
and  the microtiter plate should be kept  in a sealed bag. The
test kit may be used throughout the expiration date of the kit,
provided  it  is  stored  as  prescribed  above.  Refer  to  the
package label for the expiration date.
2. Opened test plate should be stored at 2-8°C in the aluminum
foil bag with desiccants to minimize exposure to damp air. The
kits will remain stable until the expiring date shown, provided it
is stored as prescribed above.    
3.  A microtiter  plate  reader with  a  bandwidth  of  10  nm  or  less
and an optical density  range of 0-3 OD or greater at 450nm
wavelength  is  acceptable  for  use  in  absorbance
measurement.
REAGENT PREPARATION
Bring all reagents to room temperature before use.  
1.  Wash  Buffer    If  crystals  have  formed  in  the  concentrate,
warm  up  to  room  temperature  and  mix  gently  until  the
crystals  have  completely  dissolved.  Dilute  20  ml  of Wash
Buffer Concentrate into deionized or distilled water to prepare
500 ml of Wash Buffer. 
2.  Standard    Centrifuge  the  standard  vial  at  6000-10000rpm
for  30s.  Reconstitute  the  Standard  with  1.0 ml  of  Sample
Diluent. This reconstitution produces a stock solution of 100
pg/ml. Allow the standard to sit for a minimum of 15 minutes
with  gentle  agitation  prior  to  making  serial  dilutions.  The
undiluted standard serves as  the high standard (100 pg/ml).
The Sample Diluent serves as  the zero standard (0 pg/ml).
Prepare fresh for each assay. Use within 4 hours and discard
after use.
3.  Biotin-antibody    Centrifuge  the vial before opening. Dilute
to  the  working  concentration  using  Biotin-antibody
Diluent(1:100), respectively.
4.  HRP-avidin    Centrifuge the vial before opening. Dilute to the
working  concentration  using  HRP-avidin  Diluent(1:100),
respectively.
Precaution: The Stop Solution provided with  this kit  is an acid solution. Wear
eye, hand, face, and clothing protection when using this material.
OTHER SUPPLIES REQUIRED
  Microplate  reader capable of measuring absorbance at 450
nm, with the correction wavelength set at 540 nm or 570 nm. 
  Pipettes and pipette tips.
  Deionized or distilled water.
  Squirt  bottle,  manifold  dispenser,  or  automated  microplate
washer.
  An incubator which can provide stable incubation conditions
up to 37°C±0.5°C.
SAMPLE COLLECTION AND STORAGE
  Serum    Use  a  serum  separator  tube  (SST)  and  allow
samples  to  clot  for  30 minutes  before  centrifugation  for  15
minutes at 1000 g. Remove serum and assay immediately or
aliquot  and  store  samples  at  -20°C. Centrifuge  the  sample
again  after  thawing  before  the  assay.  Avoid  repeated
freeze-thaw cycles.
  Plasma    Collect plasma using citrate, EDTA, or heparin as
an anticoagulant. Centrifuge for 15 minutes at 1000 g within
30 minutes  of  collection.  Assay  immediately  or  aliquot  and
store  samples  at  -20°C.  Centrifuge  the  sample  again   after
thawing before the assay. Avoid repeated freeze-thaw cycles.
Note: Grossly hemolyzed samples are not suitable for use in this assay. 
ASSAY PROCEDURE
Bring  all  reagents  and  samples  to  room  temperature  before  use.  It  is
recommended that all samples, standards, and controls be assayed in duplicate.
All  the  reagents  should  be  added  directly  to  the  liquid  level  in  the well.  The
pipette should avoid contacting the inner wall of the well.
1.  Add 100µl of Standard, Blank, or Sample per well. Cover with
the adhesive strip. Incubate for 2 hours at 37°C.  
2.  Remove the liquid of each well, don’t wash.  
3.  Add 100µl of Biotin-antibody working solution to each well.
Incubate  for  1  hour  at  37°C.  Biotin-antibody  working
solution may appear cloudy. Warm up  to  room  temperature
and mix gently until solution appears uniform.
4.  Aspirate  each  well  and  wash,  repeating  the  process  three
times  for a  total of  three washes. Wash: Fill each well with
Wash  Buffer  (200µl)  and  let  it  stand  for  2  minutes,  then
remove  the  liquid  by  flicking  the  plate  over  a  sink.  The
remaining drops are removed by patting the plate on a paper
towel. Complete removal of liquid at each step is essential to
good performance. 
5.  Add  100µl  of  HRP-avidin  working  solution  to  each  well.
Cover the microtiter plate with a new adhesive strip. Incubate
for 1 hour at 37°C.
6.  Repeat the aspiration and wash five times as step 4.
7.  Add 90µl of TMB Substrate to each well. Incubate for 10-30
minutes  at  37°C.  Keeping  the  plate  away  from  drafts   and
other temperature fluctuations in the dark.  
8.  Add 50µl of Stop Solution  to each well when  the  first  four
wells  containing  the  highest  concentration  of  standards
develop obvious blue color.  If color change does not appear
uniform, gently tap the plate to ensure thorough mixing.
9.  Determine the optical density of each well within 30 minutes,
using a microplate reader set to 450 nm.
CALCULATION OF RESULTS
Using  the  professional  soft  "Curve  Exert  1.3"  to  make  a  standard  curve  is
recommended, which can be downloaded from our web.
Average  the duplicate  readings  for each standard, control, and
sample and subtract  the average zero standard optical density.
Create  a  standard  curve  by  reducing  the  data  using  computer
software capable of generating a  four parameter  logistic  (4-PL) 
curve-fit. As an alternative, construct a standard curve by plotting
the mean  absorbance  for  each  standard  on  the  y-axis  against
the concentration on the x-axis and draw a best fit curve through
the points on  the graph. The data may be  linearized by plotting
the  log  of  the  bFGF  concentrations  versus  the  log  of  the O.D.
and  the best  fit  line can be determined by  regression analysis.
This procedure will produce an adequate but  less precise  fit of
the data.  If samples have been diluted,  the  concentration  read
from the standard curve must be multiplied by the dilution factor.
LIMITATIONS OF THE PROCEDURE
  The kit should not be used beyond the expiration date on the
kit label.
  Do not mix or substitute reagents with those from other lots or
sources.
  It  is  important  that  the  Standard  Diluent  selected  for  the
standard  curve  be  consistent  with  the  samples  being
assayed.
  If samples generate values higher than the highest standard,
dilute the samples with the appropriate Standard Diluent and
repeat the assay. 
  Any  variation  in  Standard  Diluent,  operator,  pipetting
technique,  washing  technique,  incubation  time  or
temperature, and kit age can cause variation in binding.
  This  assay  is  designed  to  eliminate  interference  by  soluble
receptors,  binding  proteins,  and  other  factors  present  in
biological samples. Until all  factors have been  tested  in  the
Immunoassay,  the  possibility  of  interference  cannot  be
excluded.
TECHNICAL HINTS
  Centrifuge vials before opening to collect contents.
  When mixing or reconstituting protein solutions, always avoid
foaming.
  To  avoid  cross-contamination,  change  pipette  tips  between
additions of each standard  level, between sample additions,
and between reagent additions. Also, use separate reservoirs
for each reagent.
  When using an automated plate washer, adding a 30 second
soak  period  following  the  addition  of  wash  buffer,  and/or
rotating  the  plate  180  degrees  between  wash  steps  may
improve assay precision. 
  To ensure accurate results, proper adhesion of plate sealers
during incubation steps is necessary.
  Substrate Solution should remain colorless or light blue until
added  to  the plate. Keep Substrate Solution protected  from
light. Substrate Solution should change from colorless or light
blue to gradations of blue.
  Stop Solution should be added to the plate in the same order
as  the Substrate Solution. The color developed  in  the wells
will turn from blue to yellow upon addition of the Stop Solution.
Wells  that are green  in color  indicate  that  the Stop Solution
has not mixed thoroughly with the Substrate Solution.
 
 
 
 
 
 
 
 
 
兔子碱性成纤维细胞生长因子 兔子碱性成纤维细胞生长因子 兔子碱性成纤维细胞生长因子 兔子碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)酶联免疫分析 酶联免疫分析 酶联免疫分析 酶联免疫分析
试剂盒使用说明书 试剂盒使用说明书 试剂盒使用说明书 试剂盒使用说明书
本试剂盒仅供研究使用 本试剂盒仅供研究使用 本试剂盒仅供研究使用 本试剂盒仅供研究使用
产品编号 产品编号 产品编号 产品编号: :: :CSB-E06938Rb
检测范围 检测范围 检测范围 检测范围: :: :1.56 pg/ml - 100 pg/ml
最低检测限 最低检测限 最低检测限 最低检测限: :: :0.39 pg/ml
特异性 特异性 特异性 特异性: :: :本试剂盒可同时检测天然或重组的兔子  bFGF,且与其他相关蛋
白无交叉反应。
有效期 有效期 有效期 有效期: :: :6 个月
预期应用 预期应用 预期应用 预期应用: :: : ELISA法定量测定兔子血清、血浆或其它相关生物液体中bFGF
含量。
说明 说明 说明 说明  
10. 试剂盒保存:未开封的试剂盒应储存于 2-8℃;开封后的酶标板应与干燥
剂一起储存于铝箔袋中置于 2-8℃保存。仅在此出储存条件下,产品在有
效期内可正常使用。
11. 浓洗涤液低温保存会有盐析出,稀释时可在水浴中加温助溶。  
12. 中、英文说明书可能会有不一致之处,请以英文说明书为准。
13. 刚开启的酶联板孔中可能会含有少许水样物质,此为正常现象,不会对实
验结果造成任何影响。 
实验原理 实验原理 实验原理 实验原理
用纯化的抗体包被微孔板,制成固相载体,往包被抗 bFGF 抗体的微孔
中依次加入标本或标准品、生物素化的抗 bFGF抗体、HRP 标记的亲和素,
经过彻底洗涤后用底物 TMB 显色。TMB 在过氧化物酶的催化下转化成蓝色,
并在酸的作用下转化成最终的黄色。颜色的深浅和样品中的 bFGF呈正相关。
用酶标仪在 450nm 波长下测定吸光度(OD值),计算样品浓度。  
试剂盒组成及试剂配制 试剂盒组成及试剂配制 试剂盒组成及试剂配制 试剂盒组成及试剂配制  
1.  酶联板 酶联板 酶联板 酶联板(Assay plate ):                                                              一块 (96孔)。   
2.  标准品 标准品 标准品 标准品 (Standard):                                                                   2 瓶(冻干品)。 
3.  样品稀释液 样品稀释液 样品稀释液 样品稀释液(Sample Diluent):                                                     1×20ml/瓶。 
4.  生物素标记抗体稀释液 生物素标记抗体稀释液 生物素标记抗体稀释液 生物素标记抗体稀释液( (( (Biotin-antibody Diluent) )) ):               1×10ml/瓶。 
5.  辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 ( (( (HRP-avidin Diluent) )) )     1×10ml/瓶。 
6.  生物素标记抗体 生物素标记抗体 生物素标记抗体 生物素标记抗体 ( (( (Biotin-antibody) )) ):                           1×120µl/瓶(1: 100)。 
7.  辣根过氧化物酶标记亲和素 辣根过氧化物酶标记亲和素 辣根过氧化物酶标记亲和素 辣根过氧化物酶标记亲和素 ( (( (HRP-avidin) )) ):             1×120µl/瓶(1: 100)。 
8.  底物溶液 底物溶液 底物溶液 底物溶液 ( (( (TMB Substrate) )) ):                                                       1×10ml/瓶。   
9.  浓洗涤液 浓洗涤液 浓洗涤液 浓洗涤液( (( (Wash Buffer) )) )  1×20ml/瓶,使用时每瓶用蒸馏水稀释 25 倍。   
10. 终止液 终止液 终止液 终止液( (( (Stop Solution) )) ):                                                            1×10ml/瓶。 
需要而未提供的试剂和器材 需要而未提供的试剂和器材 需要而未提供的试剂和器材 需要而未提供的试剂和器材
1.  标准规格酶标仪
2.  高速离心机
3.  电热恒温培养箱
4.  干净的试管和 Eppendof 管
5.  系列可调节移液器及吸头,一次检测样品较多时,最好用多通道移液器
6.  蒸馏水,容量瓶等 
标本的采集及保存 标本的采集及保存 标本的采集及保存 标本的采集及保存  
1.  血清:全血标本请于室温放置2小时或4℃过夜后于1000g离心20分钟,
取上清即可立即检测;或进行分装,并将标本放于-20℃或-80℃保存,但
应避免反复冻融。解冻后的样品应再次离心,然后检测。
2.  血浆:可用 EDTA 或肝素作为抗凝剂,标本采集后 30 分钟内于 2  -  8°C
1000 g离心 15 分钟,取上清即可立即检测;或进行分装,并将标本放于
-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。解冻后的样品应再次离心,然后
检测。
3.  细胞培养物上清或其它生物标本:1000g离心 20 分钟,取上清即可立即
检测;或进行分装,并将标本放于-20℃或-80℃保存,但应避免反复冻融。
解冻后的样品应再次离心,然后检测。
注 注注 注: :: :标本溶血会影响最后检测结果 标本溶血会影响最后检测结果 标本溶血会影响最后检测结果 标本溶血会影响最后检测结果, ,, ,因此溶血标本不宜进行此项检测 因此溶血标本不宜进行此项检测 因此溶血标本不宜进行此项检测 因此溶血标本不宜进行此项检测。 。。 。
标本的稀释原则 标本的稀释原则 标本的稀释原则 标本的稀释原则: :: :
首先通过文献检索的方式了解待测样本的大致含量,确定适当的稀释倍数。
只有稀释至标准曲线的范围内,检测的结果才是准确的。稀释的过程中,应
做好详细的记录。最后计算浓度时,稀释了“N”倍,标本的浓度应再乘以“N”。 
标准品的稀释原则 标准品的稀释原则 标准品的稀释原则 标准品的稀释原则: :: :2 瓶,使用前于 6000-10000rpm 离心 30 秒。 每
瓶临用前以样品稀释液稀释至 1ml,盖好后静置 10 分钟以上,然后反复颠倒
/搓动以助溶解,其浓度为 100 pg/ml,做系列倍比稀释后,分别稀释 100 pg/ml,
50 pg/ml, 25 pg/ml, 12.5 pg/ml, 6.25 pg/ml, 3.12 pg/ml, 1.56 pg/ml,样品稀
释液直接作为标准浓度 0  pg/ml,临用前 15 分钟内配制,用完丢弃,下次检
测使用新鲜配置的标准品。
如配制 50 pg/ml标准品:取 0.5ml(不要少于 0.5ml)100 pg/ml的上述标准
品加入含 0.5ml 样品稀释液的 Eppendorf 管中,混匀即可,其余浓度以此类
推。 
生物素标记抗体的稀释原则 生物素标记抗体的稀释原则 生物素标记抗体的稀释原则 生物素标记抗体的稀释原则: :: :
打开瓶盖前请离心,收集瓶壁上的溶液。临用前以生物素标记抗体稀释液稀
释,稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制(每孔 100µl),实际
配制时应多配制 0.1-0.2ml。如 10µl生物素标记抗体加 990µl生物素标记抗体
稀释液的比例配制,轻轻混匀,在使用前一小时内配制。
辣根 辣根 辣根 辣根过氧化物酶标记亲和素的稀释原则 过氧化物酶标记亲和素的稀释原则 过氧化物酶标记亲和素的稀释原则 过氧化物酶标记亲和素的稀释原则: :: :
打开瓶盖前请离心,收集瓶壁上的溶液。临用前以辣根过氧化物酶标记亲和
素稀释液稀释,稀释前根据预先计算好的每次实验所需的总量配制(每孔
100µl),实际配制时应多配制 0.1-0.2ml。如10µl辣根过氧化物酶标记亲和素
加 990µl 辣根过氧化物酶标记亲和素稀释液 的比例配制,轻轻混匀,在使用
前一小时内配制。
操作步骤 操作步骤 操作步骤 操作步骤
实验开始前,请提前配置好所有试剂,试剂或样品稀释时,均需混匀,混匀
时尽量避免起泡。每次检测都应该做标准曲线。如样品浓度过高时,用样品
稀释液进行稀释,以使样品符合试剂盒的检测范围。加样时,枪头应直接对
准液面,切勿沿孔壁加样。
4.  加样:分别设空白孔、标准孔、待测样品孔。空白孔加样品稀释液 100µl,
余孔分别加标准品或待测样品 100µl,注意不要有气泡,加样将样品加于
酶标板孔底部,尽量不触及孔壁,轻轻晃动混匀,酶标板加上盖或覆膜,
37℃反应 120 分钟。
为保证实验结果有效性,每次实验请使用新的标准品溶液。 
5.  弃去液体,甩干,不用洗涤。每孔加生物素标记抗体工作液  100µl (取 1µl
生物素标记抗体加 99µl 生物素标记抗体稀释液的比例配制,轻轻混匀,
在使用前一小时内配制),37℃,60 分钟。
6.  温育 60 分钟后,弃去孔内液体,甩干,洗板 3 次,每次浸泡 1-2分钟,
200µl/每孔,甩干。  
7.  每孔加辣根过氧化物酶标记亲和素工作液(同生物素标记抗体工作液)
100µl,37℃,60 分钟。
8.  温育 60 分钟后,弃去孔内液体,甩干,洗板 5 次,每次浸泡 1-2分钟,
200µl/每孔,甩干。
9.  依序每孔加底物溶液 90µl,37℃避光显色( (( (30 分钟内,此时肉眼可见标
准品的前 3-4 孔有明显的梯度蓝色,后 3-4 孔显色不明显,即可终止)。
10. 依序每孔加终止溶液 50µl,终止反应(此时蓝色立转黄色)。终止液的加
入顺序应尽量与底物液的加入顺序相同。为了保证实验结果的准确性,底
物反应时间到后应尽快加入终止液。
11. 用酶联仪在 450nm 波长依序测量各孔的光密度(OD 值)。 在加终止液
后 15 分钟以内进行检测。
实验备注 实验备注 实验备注 实验备注
1.  用户在初次使用试剂盒时,应将各种试剂管离心数分钟,以便试剂集中到
管底。
2.  每次实验留一孔作为空白调零孔,该孔不加任何试剂,只是最后加底物溶
液及终止液。测量时先用此孔调 OD值至零。  
3.  为防止样品蒸发,试验时将反应板放于铺有湿布的密闭盒内,酶标板加上
盖或覆膜。 
4.  未使用完的酶标板或者试剂,请于 2-8℃保存。标准品、生物素标记抗体
工作液、辣根过氧化物酶标记亲和素工作液请依据所需的量配置使用。请
勿重复使用已稀释过的标准品、生物素标记抗体工作液、或辣根过氧化物
酶标记亲和素工作液。
5.  建议检测样品时均设双孔测定,以保证检测结果的准确性。
洗板方法 洗板方法 洗板方法 洗板方法
手工洗板方法:吸去(不可触及板壁)或甩掉酶标板内的液体;在实验台上
铺垫几层吸水纸,酶标板朝下用力拍几次;将推荐的洗涤缓冲液至少 0.3ml
注入孔内,浸泡 1-2 分钟。根据需要,重复此过程数次。
自动洗板:如果有自动洗板机,应在熟练使用后再用到正式实验过程中。
计算 计算 计算 计算
请从我们的网站下载专业软件"Curve Exert 1.3",并根据提示制作标准曲线。
以标准物的浓度为横坐标(对数坐标),OD值为纵坐标(普通坐标),在半对
数坐标纸上绘出标准曲线,根据样品的 OD 值由标准曲线查出相应的浓度;
再乘以稀释倍数;或用标准物的浓度与 OD 值计算出标准曲线的直线回归方
程式,将样品的 OD 值代入方程式,计算出样品浓度,再乘以稀释倍数,即
为样品的实际浓度。
注意事项 注意事项 注意事项 注意事项
1.  本操作说明适用于 本操作说明适用于 本操作说明适用于 本操作说明适用于 48T 试剂盒 试剂盒 试剂盒 试剂盒, ,, ,  48T 试剂盒中酶联板 试剂盒中酶联板 试剂盒中酶联板 试剂盒中酶联板、 、、 、标准品 标准品 标准品 标准品、 、、 、生物素 生物素 生物素 生物素
标记抗体及辣根过氧化物酶标记亲和素减半 标记抗体及辣根过氧化物酶标记亲和素减半 标记抗体及辣根过氧化物酶标记亲和素减半 标记抗体及辣根过氧化物酶标记亲和素减半。 。。 。
2.  当混合蛋白溶液时应尽量轻缓,避免起泡。 
3.  洗涤过程非常重要,不充分的洗涤易造成假阳性。
4.  一次加样时间最好控制在 5 分钟内,如标本数量多,推荐使用排枪加样。 
5.  请每次测定的同时做标准曲线,最好做复孔。
6.  如标本中待测物质含量过高,请先稀释后再测定,计算时请最后乘以稀释
倍数。
7.  在配制标准品、检测溶液工作液时,请以相应的稀释液配制,不能混淆。 
8.  底物请避光保存。
不要用其它生产厂家的试剂替换试剂盒中的试剂。

推荐仪器
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